Ричард АС. Уайт 9 страница

снижают абсорбцию кальция в кишечнике;

усиливают экскрецию кальция почками;

цитолитичны к гематогенным злокачественным заболеваниям Митрам и цин — 25 м кг/кг, единичная внутривенная инъекция Кальцитонин

Внутривенное вливание растворов фосфатов Натрий ЭДТА Перитонеальный диализ

вовлечения костей) не продемонстрировали у них повышенную концентрацию паратгормона в сыворотке крови или РНК в раковых клетках, закодированных для паратгормона. Гиперкальциемия является наиболее распространенной находкой при аденокарциноме апокринных желез (может присутствовать более, чем в 20% случаев).

Первичный гиперпаратиреоидизм, вызванный аденомой или аденокарциномой паращитовидной железы, и вторичный гиперпаратиреоидизм при болезни почек могут усиливать гиперкальциемию у раковых больных.

При недавнем исследовании был обнаружен белок со свойствами паратгормона. Его аминотер-минальная последовательность гомологична человеческому гормону паращитовидных желез, но остальная часть молекулы имеет отличия. Ген, кодирующий этот белок, был последовательно клонирован, и в настоящее время получены доказательства того, что тРНК присутствуют в лимфоме и в апокринных железах. Эти результаты проливают свет на механизм этих заболеваний, не ясно только, какой сигнал активирует этот ген.

В нормальном состоянии содержание кальция в сыворотке крови поддерживается в постоянных пределах, причем ионизированный и связанный с белками (в основном с альбумином) кальций присутствуют в равных пропорциях. Регулирующие механизмы представлены на рисунке 2. Кис-лотноосновной баланс влияет на уровень ионизированного кальция: в кислой среде фракция ионизированного кальция увеличивается, а в щелочной среде — снижается. В клинических лабораториях обычно измеряют общую концентрацию кальция, хотя это ионизированный кальций, который является биологически активным. При определении кальциевого статуса пациента общую концентрацию кальция следует оценивать относительно сывороточного содержания белка, особенно альбумина. У раковых больных с низкой концентрацией альбумина в сыворотке из-за недоедания или дисфункции печени может быть очень выраженная гиперкальциемия с кажущейся немного повышенной сывороточной концентрацией кальция. Тяжелая гиперкальциемия у собак с множественной лимфомой наблюдается редко.

Клинические проявления гиперкальциемии отражают важную роль кальция в поддержании стабильности и проницаемости клеточных мембран. Гиперкальциемия особенно сильно сказывается на функционировании желудочно-кишечного тракта, нейромышечной и сердечно-сосудистой систем (табл. 5). Ранними неспецифическими симптомами со стороны желудочно-кишечного тракта являются рвота, анорексия, запор, наиболее тяжелые осложнения — панкреатит и пепти-ческие язвы.

Симптомы со стороны нервно-мышечной системы — подавленность, сонливость, мышечная слабость и, наконец, кома.

Гиперкальциемия может вызывать аритмию сердца и является самой частой причиной смерти пациентов от остановки сердца. Еще не до конца изучено влияние гиперкальциемии на почки, известно, что она приводит к полиурии с последующей полидипсией. Могут наблюдаться дефекты почечных канальцев, еще более усиливающие уже имеющееся обезвоживание в результате рвоты и малого приема жидкости. Уменьшение объема жидкости в организме еще больше повышает концентрацию кальция в сыворотке крови и снижают скорость клубочковой фильтрации. Этот замкнутый круг ведет к дальнейшему ослаблению функции почек и как следствие к азотемии, ацидозу и почечной недостаточности.

Гиперкальциемия, даже с легкой почечной недостаточностью, обратима, но если ее не лечить, она может привести к смерти. Таким образом, любую гиперкальциемию (>3,2 ммоль/л) у ракового больного, протекает ли она с клиническими симптомами или бессимптомно, следует лечить немедленно. Терапевтические мероприятия направлены на восстановление объема циркулирующей крови, стимуляция кальциурии и устранение первопричины этой патологии (табл. 6).

Гидратация занимает центральное место в лечении гиперкальциемии, потому что большинство пациентов обезвожено. Внутривенное введение физиологического раствора восстанавливает объем циркулирующей крови, повышает скорость клубочковой фильтрации, а следовательно, способствует выведению кальция. Поскольку требуется введение больших объемов солевого раствора за несколько часов, нужен пристальный контроль зп почечным и сердечно-сосудистым статусом пациента.

После проведения адекватной гидратации назначают диуретики, такие какфуросемид (2 мг/кг 2 раза в день) для усиления кальциурии путем снижения канальцевой резорбции натрия и кальция.

Поскольку гиперкальциемию чаще всего вызывают такие гематологические злокачественные опухоли, как лимфома и миелома, назначают корти-костероиды. Последние подавляют продукцию раковыми клетками факторов, ускоряющих резорбцию костей. Действие стероидов на другие злокачественные опухоли пока не изучено.

Описанная выше терапия обычно позволяет нормализовать концентрацию кальция в сыворотке крови в течение нескольких часов или дней и не дает серьезных осложнений. При отсутствии эффекта единичное внутривенное введение мит-рамицина (25 мкг/кг) обычно восстанавливает электролитный дисбаланс в течение нескольких дней путем прямого подавления резорбции костей или благодаря изменениям в метаболизме витамина D. Описаны и другие методы ликвидации гиперкальциемии, например, с использованием кальцитонина и ЭДТА (табл. 7), но они оказывают токсическое действие на организм или малоэффективны. После медикаментозного устранения гиперкальциемии приступают к лечению самого злокачественного заболевания.

Другие системные нарушения метаболизма

Некоторые опухоли могут изменять уровень продукции гормонов и метаболизм путем косвенной их стимуляции или подавления. Ренальные опухоли могут вызывать местную гипоксию почек, которая способствует избыточной продукции и/или активации эритропоэтина, что приводит к вторичному или неадекватному эритроцитозу.

Изменения нижнего уровня гормонов такие же, как при эндокринопатии. Гипогликемия может быть результатом развития функциональной ост-ровковоклеточной опухоли, как было описано выше, но также может быть связана с большими внутрибрюшными новообразованиями или опухолями печени. Было установлено, что гиперкальциемия, вызванная большими внутрибрюшными опухолями, особенно фибросаркомой, является результатом повышенной утилизации глюкозы. В то же время, гиперкальциемия, связанная с обширными первичными опухолями печени или метастазами, может возникать из-за сниженного глюконеогенеза. Артефакторная гипогликемия может наблюдаться у пациентов, в крови у которых содержится большое количество лейкозных клеток. В то же время это может быть результатом плазменного метаболизма глюкозы клетками, что доказано in vitro. Существуют спорные данные о производстве и секреции инсулина внепанкреатической опухолевой тканью, который выступает как фактор роста и может вызвать гиперкальциемию.

Производство гормонов некоторыми опухолями может изменить способность органов реагировать на эти гормоны. Продукция опухолями из клеток Сертоли и гранулезоклеточными опухоля-

ми эстрогена и эстрогеноподобных веществ может необратимо снизить количество предшественников эритроцитов в костном мозге собак, что приведет к панцитопении. Тяжелая псевдопаралитическая миастения, связанная с тимома-ми у людей и собак, возможно, обусловлена антителами против ацетилхолиновых рецепторов.

Обезвоживание — это наиболее частый результат системного метаболического действия растущих опухолей. Истощение объема жидкости в организме происходит из-за сниженного приема воды, частых рвоты и поноса, болезни почек и многих других обменных и эндокринных нарушений, которые связаны со злокачественными новообразованиями. Гидратация и коррекция электролитного дисбаланса, нарушения содержания газа в крови может очень быстро улучшить состояние пациента. Половину недостающего объема жидкости вводят внутривенно в первые два часа, а оставшийся объем — в последующие 24 часа. В этот период необходим строгий контроль за частотой сердечных сокращений и дыханием, шумами в легких, общим белком сыворотки и электролитами, а также центральным венозным давлением. В дальнейшем следует постоянно вводить поддерживающее количество жидкости.

Глава 5

Методы биопсии

Ричард А.С.Уайт

Выбор оптимального метода лечения онкологического больного животного следует делать после гистологической диагностики опухоли. Даже опытному хирургу-онкологу очень рискованно лечить пациента без информации, которую дает биопсия. Таким образом, биопсия является неотъемлемой частью диагностики любого онкологического заболевания и не может быть заменена предположительным диагнозом. В ветеринарной онкологии существует несколько исключений из этого правила, когда методы лечения не изменяются даже после точной гистологической диагностики. Одним из ярких примеров подобного исключения является лечение опухолей молочных желез у собак путем мастэк-томии, которая применяется при любом виде опухолей. При таких опухолях проводится послеоперационная диагностика на образце иссеченной ткани. Но следует еще раз отметить, что это исключение, и послеоперационная диагностика не применима к большинству опухолей.

ПОМНИТЕ!

Биопсия является необходимой частью диагностики при любом онкологическом заболевании.

Перед выбором метода биопсии нужно точно установить, что ожидается от патологоанатомичес-кого анализа ткани. Возможно получение следующей информации:

• Определение отдельных неопластических клеток в первичных и вторичных очагах.

• Идентификация гистологического типа опухоли.

• Определение гистологической градации опухоли (степень злокачественности, вероятность метастазирования).

• Оценка возможности хирургического иссечения путем серии разрезов через края иссеченного образца.

Рассмотрение вышеизложенных пунктов поможет клиницисту принять решение по следующим пунктам:

• Какое количество ткани необходимо взять для образца.

• Какой метод фиксации ткани образца применить (высушивание на воздухе мазка клеток аспирата, хранение иссеченного образца в растворе формалина).

• Из какого места внутри опухоли следует взять образец (из центра лимфатического узла в случае метастазов, из края иссеченного образца для оценки этого края).

И перед окончательным выбором метода биопсии следует остановиться еще на двух пунктах:

• Какой тип ткани следует взять при биопсии (жидкость, мягкая ткань и т.д.).

• Каково анатомическое место опухоли (поверхностная или кожная опухоль, орган внутри полости тела, например, печень).

Рассмотрев все изложенные аспекты, клиницист должен остановиться на одном из методов биопсии:

• Цитологические (смывы жидкости и эксфолиа-тивных клеток, пункционные аспираты, мазки-отпечатки).

• Игловая биопсия (Tru-Gut, Menghini, Jamshidi и т.д.).

• Инцизионная биопсия (образец, полученный хирургическим путем, поверхностная пункция или пункционный образец).

• Эксцизионная биопсия (полное хирургическое иссечение опухоли).

ПОМНИТЕ!

При выборе метода исследования следует учитывать ваше знание этого метода и умение его применить.

Цитологические методы

Цитологическое исследование — это анализ отдельных клеток или небольших групп клеток, взятых с поверхности опухоли из неопластических выпотов или путем пункции плотных опухолей.

Показания

Цитологические методы используются только в тех случаях, когда из анализа отдельных клеток можно получить значимую информацию. Клетки в цитологических препаратах могут не иметь никакого отношения к своему окружению внутри опухоли и архитектонике опухоли. Следовательно, основное значение цитологического исследования — простое подтверждение неопластического заболевания. В некоторых случаях цитологическое исследование позволяет разделить опухоли на гистологические группы (например, карциномы отделить от сарком). Однако следует быть осторожным при использовании этих результатов для постановки точного диагноза.

а) Жидкие аспираты и эксфолиативные клетки

Злокачественные опухоли, особенно имеющие эпителиальное или гемолимфатическое происхождение, часто слущивают клетки, которые можно подвергнуть гистопатологическому анализу. Одним из самых простых методов получения эксфолиа-тивных клеток является промывание поверхности опухоли солевым раствором (например, простатические смывы, смывы носовой полости, трахеобронхиальные смывы и т.д.). С другой стороны, опухоли внутри полостей тела продуцируют выпоты, которые также содержат неопластические клетки. Эти выпоты можно собирать различными способами, например, путем тора-коцентеза, перитонеального дренирования, арт-роцентеза, спинномозговой и костномозговой пункцией, перикардиоцентеза, выделения секрета из молочных желез.

Собранные жидкости помещают в контейнер с ЭДТА, а затем выполняют анализ общего количества ядерных клеток (обычный подсчет клеток белой крови), чтобы определить концентрацию клеток в образце:

1. В образцах, где обычно присутствует большое количество клеток (аспираты костного мозга), подсчет клеток не производят, а препараты готовят прямо из жидкости.

2. Образцы, где количество клеток составляет >10 ООО клеток/мкл, сразу наносят на предметное стекло.

3. Образцы же, где количество клеток меньше 10 ООО клеток/мкл, следует центрифугировать в течение 30 минут со скоростью 2 ООО об/мин и из осадка приготовлять мазки.

Для приготовления мазка каплю жидкости наносят на предметное стекло, а затем на него торцом устанавливают второе стекло. Размазывают каплю по поверхности нижнего стекла, держа второе стекло под прямым углом, препарат высушивают на воздухе, после чего окрашивают или фиксируют в спирте перед отправкой в гистологическую лабораторию.

6) Пункционные аспираты

Тип многих солидных опухолей можно определить по клеткам, полученным путем пункционной (аспирационной) биопсии. Особенно этот метод подходит для диагностики опухолей эпителиального происхождения или опухолей с редким стро-мальным прикреплением. Мезенхимальные опухоли и опухоли с большим стромальным компонентом менее пригодны для получения клеток путем аспирации. Пункционную биопсию можно выполнять без общего наркоза и даже без применения седативных препаратов. Непослушным животным можно дать какое-либо химическое средство сдерживания, но введения местных анальгетиков следует избегать, потому что они способствуют разрывам ткани в месте пункции.

Оборудование для пункционной биопсии:

• Гиподермальные (подкожные) иглы №23 или тоньше.

• Гиподермальный шприц на 10 мл.

• Предметные стекла.

Шаг 1: место пункции обрабатывают антисептиками, а затем делают прокол большой иглой, чтобы пункционная игла не застревала и не засорялась кожной тканью.

Шаг 2. При введении пункционной иглы опухоль должна быть иммобилизована (рис. 1).

Шаг 3. Поршень шприца быстро оттягивают на половину объема, чтобы всосать аспират (рис. 2). В этот момент опухоль следует придерживать как можно ближе к поверхности кожи, чтобы уменьшить риск диссеминации опухолевых клеток вдоль траектории движения иглы (рис. 3). Хотя через один пункционный прокол можно взять несколько образов, тем не менее, следует быть осторожными и не допустить разрыва опухолевой капсулы (рис. 4.). Ручной ас-пирационный пистолет (рис. 5) позволяет поддерживать иглу в постоянном положении и манипулировать только одной рукой, другая остается свободной.

Шаг 4. Поддерживая небольшое отрицательное давление в шприце, иглу вынимают из опухоли. Внутри шприца вряд ли будет видна какая-либо ткань, основной образец находится внутри просвета иглы. Иглу снимают со шприца, а поршень оттягивают до конца (рис. 6).

Шаг 5. Иглу надевают на шприц, образец выдавливают на предметное стекло (рис. 7) и готовят мазок.

в) Биопсия костного мозга

Взятие проб костного мозга показано при обследовании больных различными неопластическими состояниями, включая новообразования лимфатической и «миелопролиферативной» систем. У мелких собак и кошек легче всего проводить пункцию гребня подвздошной кости или межвертлуж-ной ямки бедренной кости (рис. 8).

Процедуру обычно выполняют под седативны-ми препаратами вместе с аналгезией, а в ткани, покрывающие место биопсии, включая надкостницу, вводят местные обезболивающие средства. Для пункции гребня подвздошной кости, пациента укладывают в стернальное положение, а для пункции бедренной кости — в латеральное.

Иглы для пункции кости (Rosenthal, Klima) плотно насаживаются и фиксируются на зонде, чтобы не допустить воздействия внешней ткани или кортикальной зоны кости. Иглу вводят в небольшой разрез на коже и продвигают к кортикальной зоне кости зигзагообразными движениями вокруг оси иглы. Когда игла плотно вошла в костномозговую полость, зонд убирают, а к игле прикрепляют шприц объемом 10 мл. Затем проводят пункцию, как при пункционной биопсии (см. выше), то есть быстро оттягивают поршень и всасывают образец. Но, в отличие от пункции мягких тканей, небольшое количество костного мозга должно показаться внутри шприца. Шприц вынимают, и по капле костного мозга наносят сразу на несколько предметных стекол. Для удаления избытка крови'перед приготовлением мазков на короткое время стекла устанавливают вертикально.

г) Мазки-отпечатки

Мазки-отпечатки делают путем непосредственного контакта эксфолиативных клеток на поверхности опухоли и предметного стекла. Мазки можно делать, прикладывая предметные стекла к рыхлой или изъязвленной поверхности в естественном состоянии или к срезу хирургического образца.

Шаг 1. Поверхность опухоли или иссеченного образца осторожно промокают бумажной салфеткой, чтобы удалить избыток жидкости или ткани (рис. 9).

Шаг 2. Затем к поверхности опухоли прикладывают предметное стекло, а затем отпечаток сушат на воздухе (рис. 10).

Преимущества

Цитологическое исследование имеет ряд преимуществ перед другими методами биопсии:

• Цитологические образцы можно легко получить при использовании минимального оборудования (для получения пункционных ас-пиратов нужны только гиподермальные иглы и шприц).

• Не нужны седативные препараты или анестезия для сдерживания пациента.

• Образцы получают при минимальном повреждении опухоли и окружающих тканей.

• За одну процедуру можно взять образцы из нескольких мест опухоли.

• Препараты готовят и окрашивают быстро без применения специального оборудования.

Недостатки

• Результаты цитологического исследования нельзя считать достаточным аргументом для точного диагноза. В случае очень плотной опухоли конечный диагноз можно поставить только после исследования иссеченного образца.

Методы биопсии

Рис. 7. Пункционная биопсия: аспират выдавливают из иглы на предметное стекло (из него готовят мазок или фиксируют).

Рис. 10. Мазки-отпечатки: поверхность опухоли аккуратно прикладывают к предметному стеклу, чтобы получить отпечатки ткани.

Рис. 9. Мазки-отпечатки: срез образца опухолевой ткани подсушивают бумажной салфеткой.

Рис. 11. Игловая биопсия при помощи системы Tru-Cut:

а — иглу вводят в опухоль через небольшой разрез кожи, канюля закрывает углубление в обтураторе;

б — обтуратор погружают в ткань опухоли и поворачивают, чтобы углубление заполнилось тканью;

в — внешнюю канюлю задвигают, чтобы отделить кусочек ткани;

г — иглу вынимают из опухоли и, отодвинув канюлю, осматривают полученный образец.

• Цитологическое исследование служит только для идентификации неопластических клеток или больших групп опухолей. Оно не дает информации об архитектонике опухоли, ее стро-мальной ткани или гистопатологическом типе.

• Большинство опухолей (особенно саркомы) состоят из большого количества соединительной ткани и отшелушивают мало клеток, поэтому в данном случае цитологические образцы имеют ограниченное значение. И наоборот, потенциально возможно загрязнение периферическими клетками крови образцов, взятых из опухолей с малой стромальной поддержкой.

• Для интерпретации цитологических образцов нужен опыт, потому что они отличаются от обычных гистологических образцов и используются реже.

Игловая биопсия

Игловую биопсию используют для получения небольших кусочков ткани цилиндрической формы из солидных опухолей. Из этих образцов делают срезы и окрашивают обычными методами.

Показания

Данный вид биопсии применяют, когда значительные образцы ткани нужны не только для идентификации неопластических клеток, но также для оценки некоторых аспектов архитектоники опухоли.

а) Биопсия иглами Tru-Cut

Наиболее широко при игловой биопсии используют иглы Tru-Cut (Travenol Laboratories, USA), которые имеют диаметр 14 G и различную длину. Хотя эти иглы предназначены для одноразового использования, но в некоторых случаях их можно использовать повторно после холодной стерилизации. При игловой биопсии пациенту обычно дают седатив-ные препараты, а в место взятия материала вводят местное обезболивающее. Но более желателен общий наркоз, особенно в случае глубокой биопсии. Шаг 1. Кожу над местом взятия материала обрабатывают антисептическими средствами, а затем на ней делают небольшой разрез для введения иглы.

Шаг 2. Иглу вместе с обтуратором вводят в разрез, в этот момент внешняя канюля закрывает углубление для взятия образца в обтураторе (рис. 11а).

Шаг 3. Центральный обтуратор погружают в ткань опухоли и поворачивают, чтобы углубление заполнилось тканью (рис. 116).

Шаг 4. Внешнюю канюлю задвигают, чтобы отделить кусочек ткани (рис. 11в).

Шаг 5. Иглу удаляют из опухоли, а канюлю оттягивают и осматривают полученный образец (рис. 11 г). Образец ткани вымывают солевым раствором из углубления в игле и помещают в фиксирующий раствор.

Очень хорошей модификацией системы Tru-Cut является шприц-пистолет (Boipty Ltd, Japan), который удерживает иглу и автоматически выбрасывает обтуратор, благодаря чему у оператора одна рука остается свободной для фиксации опухоли.

б) Игловая биопсия костного мозга

Альтернативой пункционной аспирационной биопсии костного мозга является получение плотных цилиндрических образцов. У крупных собак местом для взятия образца является гребень подвздошный кости или латеральная сторона проксимальной части плечевой кости, а у мелких животных — межвертлужная ямка бедренной кости. Иглы для этого вида биопсии (тип Джамшиди) подобны по строению аспирационным иглам, но длиннее и шире. Метод введения иглы в кортикальную зону кости такой же, как при аспирационной биопсии костного мозга (см. выше). Когда игла полностью оказывается в костномозговой полости, зонд удаляют, а иглу продвигают дальше на 1—2 см для забора ткани. Образец удаляют из иглы и помещают в фиксирующий раствор.

Преимущества

• Благодаря этому методу можно получить большее количество ткани, чем при аспирации.

• Биоптаты могут сохранять архитектонику опухоли и годятся для обычных анализов.

• Можно проводить биопсию в сравнительно недоступных местах (легкие, предстательная железа, печень и т.д.) без хирургического вмешательства.

• Через один разрез можно взять несколько образцов.

Недостатки

• Игловая биопсия сопряжена с большим числом возможных осложнений (кровотечение, отек, дискомфорт) , чем аспирационных. Поэтому игловую

Глава 5

биопсию богатых кровеносными сосудами органов следует производить очень осторожно. • Часто при этой процедуре требуется общий наркоз.

Инцизионная биопсия

Инцизионная биопсия представляет собой хирургическое удаление куска солидной опухоли.

Показания

\Л ипгл UAUuatT Кхлпттгчха uf*r\fcvr\тчл\лп па тг\р»_

ШЩГипиШШЛ Ul'lUUVl'l/l 1 1 V \J\J fWJJ. J, ГI VI CI , IX V/ I j. 1С» i.£S^>-

буется достаточно большое количество ткани для определения типа опухоли и ее гистологической идентификации. Этот метод также показан, когда опухоль располагается в недоступных для игловой биопсии местах (поражения костей, опухоли в брюшной полости).

а) Хирургическая эксцизия

Невозможно описать процедуру инцизионной биопсии в каждом конкретном случае, но есть ряд основных принципов, о которых следует помнить при проведении этой процедуры:

1. Биопсийный канал следует считать потенциально загрязненным неопластическими клетками,

поэтому его нужно делать с таким расчетом, чтобы в последствии использовать для каких-либо хирургических процедур, необходимых для уточнения диагноза.

2. Нужно выделять как можно больше неопластической ткани, чтобы облегчить манипуляции с тканями.

3. Если возможно, образец должен включать и соседнюю нормальную ткань для гистологического сравнения.

4. В иссеченном участке не должно быть некроза и кровотечения. Для минимизации артефактов следует использовать диатермию и тканевые пинцеты.

5. Из больших кусков ткани следует сделать срезы, чтобы они полностью пропитались фиксирующим раствором.

6) Захват с поверхности

Захват тканей с поверхности опухолей применяется для получения образцов со слизистых оболочек (дыхательных путей, желудочно-кишечного тракта и мочевых путей). Образцы получают путем «откусывания» специальным зажимом-ку-сачками(рис. 12а—в). Место биопсии может быть доступным напрямую (полость рта, влагалище, прямая кишка) или через волоконно-оптические эндоскопы (желудок). Для этого метода редко применяется даже местная анестезия, хотя в не-

Рис. 12. Биопсийные зажимы-кусачки:

а — внутренний зажим-кусачки, который используют в эндоскопических системах;

б— зажим-кусачки «аллигатор» для получения образцов со слизистых оболочек;

в — зажим-кусачки «аллигатор» для колоректальной биопсии.

которых случаях нужны седативные препараты или общий наркоз.

в) Биопсийный перфоратор

При помощи биопсийного перфоратора получают образцы кожи и подкожной клетчатки. Биопсию выполняют после местной анестезии. Перфоратор состоит из циркулярного лезвия, которое вдавливают в поверхность опухоли и поворачивают либо вручную, либо механическим путем (при помощи моторчика или ударного механизма). Образец находится внутри лезвия; он может быть как дискообразным, так и цилиндрическим, в зависимости от глубины, на которую погружают перфоратор. Наиболее популярны перфораторы Keyes (Boipsy punch, Stiefel Laboratories UK Ltd.), с лезвиями различного диаметра.

Преимущества

• Инцизионная биопсия дает возможность видеть опухоль, благодаря чему можно точно выбрать место для биопсии и снизить риск послеоперационных осложнений.

• Можно взять сравнительно большое количество ткани, что облегчает выбор гистологических методов исследования.

Недостатки

• Для проведения инцизионной биопсии обычно требуется общий наркоз.

• Эта процедура занимает гораздо больше времени, чем игловые методы.

Эксцизионная биопсия

Эксцизионная биопсия — это иссечение всей опухолевой массы, а затем отделение нужного образца для гистологического исследования.

Показания

В идеале следует проводить гистологический анализ всей опухоли, чтобы поставить точный диагноз. Эксцизионная биопсия выполняется в случаях, когда диагностическая биопсия невозможна по следующим причинам:

1. Отсутствие доступа (опухоли в желудочно-кишечном тракте).

2. Лечение вряд ли повлияет на гистологическую информацию (опухоли молочных желез).

Преимущества

• Эксцизионная биопсия наилучший способ постановки точного диагноза, поскольку она предоставляет нужное количество ткани для оценки архитектоники опухоли.

• Образцы можно взять с разных сторон опухоли.

• По образцам можно сразу оценить эффективность хирургического иссечения.

Недостатки

• Для большинства опухолей трудно выбрать метод лечения без диагностической биопсии, поэтому, как правило, одна эксцизионная биопсия не достаточна.

• Следовательно, ее следует комбинировать с другими методами диагностической биопсии.

7 Ричард А. С. Уайт

Глава 6

Цитологическая диагностика новообразований

Дэвид Э. Босток и Элизабет С. Фило

Цитологические исследования применяются для диагностики широкого спектра неопластических болезней у мелких животных — от поверхностных опухолей кожи и подкожной клетчатки до опухолей внутренних органов, предстательной железы, щитовидной железы и лимфатических узлов. Жидкости, содержащиеся в различных полостях тела, — костный мозг, спинномозговая жидкость, смывы полости носа и бронхов также могут быть подвергнуты цитологической оценке на предмет присутствия неопластических клеток.

⇐ Предыдущая 4 5 6 7 8910 11 12 13 Следующая ⇒