Хелпикс

Главная

Контакты

Случайная статья



УЧЕБНОЙ ПРАКТИКИ 3 страница

⇐ ПредыдущаяСтр 3 из 8Следующая ⇒


Дезинфицирующие растворы используются однократно. Для приготовления 6% перекиси водорода с 0,5% раствором моющего средства нужно взять 240 мл 27% перекиси водорода, 5 г моющего средства и добавить 755 мл воды. Емкости для проведения дезинфекции должны быть четко промаркированы, иметь крышки. Изделия либо полностью погружают в раствор, либо двукратно протирают салфеткой из бязи или марли с интервалом 15 мин   Участие в проведении предстерилизации использованной лабораторной посуды, инструментария, средств защиты 1. Замачивание в моющем растворе при полном погружении изделия. При применении «Биолота» первоначальная температура раствора 40±5 0С; других моющих средств – 50±5 0С, время выдержки – 15±1 мин. Температура раствора в процессе мойки не поддерживается. 14 2. Мойка каждого изделия в моющем растворе при помощи ерша или ватно-марлевого тампона в течение 0,5±0,1 мин. 3. Споласкивание под проточной водой. При применении моющего средства «Биолот» в течение 3,0±1,0 мин.; других моющих средств – 10, ±1,0 мин. 4. Споласкивание дистиллированной водой в течение 0,5±0,1 мин. 5. Сушка горячим воздухом при температуре 850С до полного исчезновения влаги. Механическую очистку осуществляют с помощью специального оборудования струйным, ротационным методами, ершеванием или с применением ультразвука. Моющие средства те же. Качество предстерилизационной очистки изделий оценивают на наличие крови и путем постановки азопирамовой пробы остаточных количеств щелочных компонентов моющего вещества. Самоконтроль в КДЛ проводиться ежедневно, контролю подвергают не менее 1% от одновременно обрабатываемых изделий одного наименования, но не менее 3-5 единиц. При положительной пробе на кровь или моющее средство всю группу контролируемых изделий подвергают повторной обработке до получения отрицательных результатов. Контроль качества предстерилизационной очистки работники санитарно-эпидемиологической службы проводят 1 раз в квартал.  
   
   
   
   
   
   
   
   
   
   
   
   
   
   
   
   
Дата, место проведения УП Содержание и объем работы 2 день Оценка, подпись преподавателя
  Участие в подготовке рабочего места для проведения общеклинических исследований кала и дуоденального содержимого

 
  Подготовка оборудования, расходного материала, реактивов - Включить полностью освещение рабочего места и убедиться в исправ­ной работе светильников. - Проверить санитарное состояние рабочего места и проветрить его, от­крыв окна или фрамуги и двери. Убедиться в том, что температура воздуха на рабочем месте соответст­вует установленным санитарным нормам. - Надеть спецодежду, спецобувь и другие средства индивидуальной защиты. - Подготовить рабочую зону для безопасной работы. - Проверить наличие и надежность подсоединения защитного за­земления к корпусам электрооборудования (если рабочее место с электрооборудованием). - Убедиться в исправности электрооборудования рабочего места (если имеется): све­тильники должны быть надежно подвешены к потолку и иметь светорассеивающую арматуру; электрические коммутационные коробки должны быть закрыты, а электророзетки — фальшвилками; корпуса и крышки вы­ключателей и розеток не должны иметь трещин и сколов, а также оголен­ных контактов. При использовании технических средств убе­диться в их исправности и целостности подводящих кабелей и электровилок. - Подготовить необходимое для работы оборудование и инвентарь. Проверить его исправность.
  Подготовка растворов для дезинфекции отработанного материала 1.Отработанные предметные стекла, пипетки, пробирки, пробки, стеклянные палочки, химические стаканчики и т.п. складывают в течение рабочего дня в емкости с дезинфицирующим раствором до полного вертикального погружения (10%-ный хлорамин, «Велтолен», «Аламинаг», дезсредства типа «Септодор», «Дианокс», «Виркон» и т.д., допущенные к применению в установленном порядке) для предварительного обеззараживания. 2. Заключительное обеззараживание лабораторной посуды проводится путем кипячения в воде (с момента закипания не менее 30 минут) с добавлением хозяйственного мыла или жидкого моющего средства. При соответствующих условиях можно использовать автоклавирование. После дезинфекции посуда допускается для мытья и стерилизации. 3. Ватно-марлевый материал, бумажные фильтры и разовые деревянные палочки уничтожаются путем сжигания или выброса в контейнер для мусора после экспозиции в одном из дезинфицирующих растворов или предварительно засыпаются сухим порошком хлорной извести или хлорамина. 4. Пробы фекалий, мокроты, желчи, мочи засыпаются сухой хлорной известью или белильной термостойкой известью или хлорамином перед выбросом в контейнеры или сливом в общую канализационную систему (при соответствующих условиях для обезвреживания используют автоклавирование).  
  Регистрация и маркировка проб В направлении на лабораторные исследования (заявке) должны быть отображены следующие данные: - дата и время назначения; - дата и время взятия крови (сбора биологического материала); - фамилия и инициалы пациента; - отделение, номер истории болезни, номер палаты; - возраст, пол; - диагноз; - время приема последней дозы препаратов, способных повлиять на результата анализа; - фамилия и инициалы лечащего врача, назначившего исследование; - перечень необходимых исследований; - подпись специалиста, проводившего взятие крови или другого биологического материала.
  Подготовка макропрепаратов и микропрепаратов кала для копрологического и паразитологического исследования Макроскопические методы служат для обнаружения в кале целых половозрелых гельминтов или их фрагментов невооруженным глазом или с помощью ручной лупы и/или стереомикроскопа. На поверхности кала после дефекации можно видеть активно ползающих остриц; иногда выделяются с калом аскариды; у пациентов с дифиллоботриозом могут выделяться обрывки стробилы лентеца, а у инвазированных свиным цепнем с калом часто отходят членики гельминта. У инвазированных бычьим цепнем также происходит отхождение члеников, однако значительная доля члеников отходит активно вне дефекации. В живом состоянии такие членики пациенты часто сравнивают с лапшой. Пациент может доставить членики в лабораторию, но если они подсохли, то на лапшу они перестают быть похожи, а выглядят скорее как чешуйки размером с ноготь мизинца. Перед исследованием такой членик следует размочить в физиологическом растворе. Кроме того, за отхождением взрослых гельминтов необходимо следить при оценке результатов лечения. Необходимые реактивы и оборудование Чашки Петри Черная бумага Пинцеты Препаровальные иглы Предметные стекла большие (6 10; 8 12 см) Лупа, микроскоп и бинокулярный стереоскопический микроскоп типа МБС Подготовка к исследованию 1) Извлекать пинцетом или препаровальной иглой все подозрительные частицы и крупные образования на отдельное предметное стекло или чашку Петри. 2) Образования, подозрительные на фрагменты гельминтов, рассматривать под микроскопом МБС или под лупой между двумя предметными стеклами. 3) Мелких гельминтов рассматривать в капле глицерина или физиологического раствора под микроскопом при увеличении: окуляр 7 или 10, объектив 8 или 10. 4) Членики ленточных гельминтов поместить на предметное стекло, подсушить, закрыть другим предметным стеклом, слегка сдавить и рассмотреть строение матки. 5) Микроскопия всех визуально обнаруженных в кале паразитов или фрагментов обязательна для уточнения морфологических особенностей и идентификации паразита. Применение. Метод применяется при идентификации зрелых паразитов или их фрагментов, например для дифференциальной диагностики члеников цестод (бычьего, свиного цепня и широкого, чаечного лентеца)   Микроскопические методы  Метод толстого мазка под целлофаном по Като и Миура Толстый мазок представляет собой тонкий слой пробы кала на предметном стекле под гигроскопическим целлофаном, пропитанным смесью глицерина, фенола и малахитового зеленого. Примечание. Гидрофильный целлофан горит в отличие от полиэтиленовой пленки, которая плавится и непригодна для исследования. Необходимые реактивы и оборудование Глицерин Раствор фенола 6%-й (100 мл дистиллированной воды + 6 г фенола) Раствор малахитового зеленого 3%-й (2,5 г малахитовой зелени + 75 мл дистиллированной воды) Целлофан (гигроскопический) Обезжиренные предметные стекла Палочки стеклянные или деревянные Валик или резиновая пробка Микроскоп Подготовка к исследованию Приготовление рабочего раствора Като: 100 мл 6%-го раствора фенола + 100 мл глицерина + 1,2 мл 3%-го раствора малахитового зеленого (раствор можно хранить длительное время в склянке из темного стекла с притертой крышкой). При отсутствии фенола и малахитовой зелени можно использовать раствор глицерина (50 мл глицерина + 50 мл дистиллированной воды). Подготовка целлофановых полосок. Нарезать полоски из гидрофильного целлофана, чтобы их размер соответствовал размеру предметного стекла. 1) Полоски поместить в рабочий раствор Като не менее, чем на 24 ч до проведения анализа. В 200 мл рабочего раствора можно обрабатывать до 5 тыс. новых целлофановых полосок. 2) На предметное стекло нанести пробу кала размером с горошину. Весь объем пробы кала растереть индивидуальной стеклянной палочкой по стеклу. 3) Мазок кала накрыть целлофановой полоской, обработанной в растворе. 4) Целлофан сверху притереть резиновой пробкой или специальным валиком, ширина которого соответствует или немного больше ширины предметного стекла, до получения тонкого, равномерного, прозрачного слоя. 5) Препарат просветляется при комнатной температуре в течение 20-30 мин. 6) Микроскопировать при увеличении: объектив 8 или 10, окуляр 7 или 10 (для уточнения морфологического строения яиц гельминтов - объектив 40).    
  Подготовка микропрепаратов желчи Желчь выливают в чашки Петри, иглой и шпателем отбирают комки слизи, помещают на предметные стекла, накрывают их покровными стеклами и исследуют под малым и большим увеличением. При отсутствии комков препараты готовят из осадка желчи после ее центрифугирования.
  Участие в проведении копрологического исследования Определение физических и химических свойств кала Кал для исследования необходимо собирать после самопро­извольной дефекации в чистую, сухую и достаточную по объему посуду, желательно использовать пластмассовые баночки с ши­роким горлом. Нельзя собирать кал в посуду с узким горлом, в картонные и спичечные коробки. Желательно проводить ис­следование сразу же после дефекации, но не позднее 8—10 ч. Макроскопическое исследование должно проводиться леча­щим врачом. Врач обязан охарактеризовать количество фекаль­ных масс, консистенцию, форму, окраску, запах, а также наличие патологических продуктов, остатков пищи, посторонних тел, члеников гельминтов, гноя, крови. Количество кала сильно варьирует и в условиях смешанного питания составляет ежедневно 100—250 г. Объем кала зависит от принятой пиши, состояния пищеварительного канала, пери­стальтики кишечника. У людей крепкого телосложения с хоро­шим аппетитом выделяется больше каловых масс, при употреб­лении значительного количества углеводов объем также увеличи­вается. У любителей мяса, мучной продукции, яиц, творога (они полностью всасываются) наблюдается скудный объем кала. При ускоренной эвакуации из кишечника — обильный стул. При запорах выделяется мало кала. Консистенция кала зависит от присутствия воды, жира, расти­тельной клетчатки. Оформленный стул бывает мягким или плотным. У вегетарианцев стул мягкой конси­стенции за счет содержания большого количества растительной клетчатки, при мясной пище кал более плотный. Окраска кала зависит от присутствия стеркобилина, в норме при смешанном питании имеет коричневые оттенки. Меконий новорожденных имеет зеленый цвет за счет биливердина, у грудных детей стул золотисто-желтый из-за присутствия билиру­бина. На цвет кала влияют пищевые красители, лекарственные препараты. Мучная и молочная диета ок­рашивает кал в светло-коричневый цвет. Кровяная колбаса, чер­ника, черная смородина, красное вино, кофе изменяют цвет фе­кальных масс от черных до красных оттенков. Темно-корич­невые фекалии бывают при гемолитических состояниях; при кровотечении из верхних отделов тонкого кишечника и желудка примесь крови изменяет цвет кала в черный (мелена); а красный цвет наблюдается при кровотечении из нижних отделов толстого кишечника, геморроидальных вен, язвенном колите, дизентерии, раке кишечника, травме, трещинах заднего прохода. Зеленый цвет кала может быть при энтеритах, ускоренной эвакуации из кишечника, дисбактериозе. Ахоличные, бесцветные фекальные массы выделяются при механической желтухе, холелитиазе, раке головки поджелудочной железы. Серовато-грязный, перламутро­вый цвет наблюдается при панкреатите. Запах кала зависит от состояния кишечника и связан с при­сутствием индола и скатола, продуктов расщепления белков. При употреблении мясной пищи запах сильнее, а растительной — слабее. Реакция кала определяется при помощи индикаторной бу­мажки. Форма кала. Нормальный кал имеет цилиндрическую форму с толщиной столбика в 2—4 см. При употреблении большого ко­личества растительной пищи кал теряет форму и становится не­оформленным, густым. С увеличением плотности кал приобрета­ет форму комков различной величины, на поверхности которых иногда видны перетяжки. Слизь в небольшом количестве в норме всегда присутствует в кале. Много слизи наблюдается при спастических запорах, слизистых колитах, функциональных энтеропатиях, неспецифи­ческом энтероколите, злокачественных заболеваниях, туберкуле­зе, дизентерии; слизь, пропитанная билирубином, чаще выделя­ется из тонкого кишечника. Кровь в кале макроскопически выявляется при раке прямой кишки, геморрое, язвенном колите. ХИМИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ КАЛА Его проводят для выявления скрытого кровотечения, для ус­тановления характера воспалительного процесса, дисбактериоза, при ахоличном кале. При исследовании применяются химиче­ские реакции и экспресс-методы с использованием реагенных полосок. МИКРОСКОПИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ КАЛА Для проведения анализа кала готовят каловую эмульсию. Помещают немного кала в ступку, добавляют небольшое количе­ство дистиллированной воды или физиологического раствора. Смесь хорошо перемешивают, по каплям наносят на предметные стекла и готовят четыре препарата: один нативный, позволяю­щий обнаружить патологические элементы, яйца гельминтов; второй препарат с раствором Люголя для выявления крахмала и йодофильной флоры; третий — с суданом III для определения капель нейтрального жира; четвертый — с раствором метиленовой сини (5 г/л) для дифференцировки капель нейтрального жи­ра и капель жирных кислот. Красители добавляют соответствен­но в мазки, покрывают покровным стеклом и микроскопируют. В норме в препарате при микроскопировании кала на фоне детрита и флоры выявляются единичные переваренные мышеч­ные волокна в виде округлых образований желтого или зеленого цвета, в небольшом количестве непереваримая клетчатка, мыла. При патологии обнаруживаются остатки пищевых продуктов животного происхождения: мышечные волокна, соединительная ткань, жир, жирные кислоты, мыла; элементы растительной пи­щи: переваримая и непереваримая клетчатка, крахмат; элементы слизистой кишечной стенки (эпителий, лейкоциты, эритроциты), кристаллические образования, флора, детрит. Детрит составляет основной фон при микроскопировании нормального кала. Мышечные волокна имеют различный вид в зависимости от степени переваривания под действием протеолитических фер­ментов. Переваренные мышечные волокна представляют собой обрывки волокна неправильной, округлой формы с закруглен­ными краями, без исчерченности, блестящие, желтые или зеле­новатые. Частично переваренные мышечные волокна сохраняют цилиндрическую форму, могут быть различной величины, с по­перечной исчерченностью. Непереваренные мышечные волокна сохраняют цилиндрическую форму и имеют продольную исчерченность. Креаторея — наличие в кале большого коли­чества мышечных волокон, наблюдается при гипосекреции и ахилии желудка, при поражении поджелудочной железы, при быстром прохождении химуса по кишечнику, нарушении всасы­вания белка через кишечную стенку. Соединительная ткань в виде тонких волокон имеет двойное преломление. Нейтральный жир имеет форму прозрачных бесцветных или желтоватых капель, располагающихся отдельноили в виде слив­ных капель, окрашивается суданомIII в оранжевый, желтый или красный цвет. Стеаторея — большое количество нейтрального жира в кале, отмечается при поражении поджелудочной железы и при ускоренной эвакуации жира по тонкому кишечнику. Кристаллы жирных кислот встречаются в виде тонких, неж­ных иголок. Мыла имеют форму толстых, коротких игл, глыбок или ват­рушки, цветка. Если добавить к препарату уксусную кислоту (300 г/л) и прокипятить смесь, то образуются капли жирных кислот. В кале встречаются остатки пищи растительного происхож­дения, представленные крахмалом и клетчаткой. Крахмал в нативном препарате имеет вид округлых, оваль­ных, многогранных образований различной величины, хорошо преломляющих свет, а также форму крахмальных зерен, распо­ложенных внеклеточно или заключенных в клетках различных овощей. Дифференцируется крахмал в препаратах, окрашенных раствором Люголя. Амилорея — большое количество крахмала в кале, может быть при употреблении диеты с богатым содержанием углеводов, при по­ражении поджелудочной железы, нарушении всасывания в тон­ком кишечнике, ускоренной эвакуации крахмала по кишечнику. Переваримая клетчатка — это нежные образования, имею­щие тонкую, легко разрушающуюся оболочку. Непереваримая клетчатка в кишечнике не расщепляется и встречается в виде грубых непрозрачных кусков твердой или плотной консистенции.  
  Исследование кала на скрытую кровь В настоящее время используется четыре основных способа определения скрытой крови в испражнениях:
  • Реакция Грегерсена (бензидиновая проба);
  • Реакция Вебера (гваяковая проба);
  • Иммунохимический анализ кала;
  • Флуоресцентный тест.
  Реакция Грегерсена (бензидиновая проба)   Бензидиновая проба — это простой и быстрый лабораторный тест, позволяющий обнаружить кровь не только в кале, но также, например, в моче, рвотных массах и любой другой биологической жидкости пациента. Это возможно за счет окисления бензидина (парадиаминодифенила) перекисью водорода или бария в присутствии гемоглобина. У бензидиновой пробы есть несколько вариаций, самая часто используемая из них была предложена врачом М. Грегерсеном, потому и носит его имя. Суть метода в следующем: берут 0,025 г бензидина, к нему добавляют 0,1 г перекиси бария и 5 мл 50% раствора уксусной кислоты, взбалтывают все до полного растворения, наносят несколько капель состава на предметное стекло, по которому тонким слоем размазан исследуемый кал, и наблюдают за реакцией. Если скрытая кровь есть, возникает яркое сине-зеленое окрашивание. Существует альтернативный вариант – готовят насыщенный раствор бензидина в уксусной кислоте и смешивают с 3% раствором перекиси водорода в равных частях. Результат будет выглядеть примерно так же, да и стоимость исследования мало изменится. Плюсы:
  • Очень высокая чувствительность – 1:100 000;
  • Быстрота получения результата – почти мгновенно;
  • Доступность в любой лаборатории;
  • Невысокая цена.
Минусы:
  • Необходимость в тщательной подготовке к сдаче анализа кала на скрытую кровь по методу Грегерсена, поскольку бензидиновая проба дает положительную реакцию на животный гемоглобин из пищи.
Реакция Вебера (гваяковая проба)   Помимо двух озвученных, у этого способа диагностики есть еще несколько названий: проба Ван-Деена или Альмена-Ван-Деена, гемоккульт-тест. Что любопытно, реакция с применением гваяковой смолы является первой в мировой медицинской практике методикой обнаружения скрытой крови в кале и прочих биологических жидкостях человека. Доктор Ван Деен предложил ее в 1864 году, и она до сих пор активно используется во многих странах. Суть гваяковой пробы в следующем: берут 3-5 г исследуемого кала, растворяют в уксусной кислоте, при этом выделяется эфирный экстракт, к нему добавляют перекись водорода и настойку гваяковой смолы, а потом наблюдают за изменением цвета реактивов в пробирке. Если состав стал синим, значит, результат анализа на скрытую кровь в кале положительный. Тест повторяют в общей сложности шесть раз: изучают по два образца из биоматериалов, последовательно взятых в течение трех дней. Плюсы:
  • Оперативность.
  • Доступная цена.
Минусы:
  • Невысокая чувствительность – реакция будет положительной только в случае кровопотери в объеме от 30 мл и более, колоректальный рак обнаруживается в трети случаев, доброкачественные опухоли кишечника – лишь в 15% случаев;
  • Жесткие требования к диете перед анализом кала на скрытую кровь – гваяковая проба чувствительна не только к пероксидазе гема человеческого гемоглобина, но и к пероксидазам других гемов, содержащихся в пище.
  Иммунохимический анализ кала   Этот анализ иначе называют иммунологическим или иммунохроматографическим тестом. Методика базируется на реакции, которая возникает при взаимодействии специфических антител с гемоглобином человеческой крови. Ошибки исключены, поскольку антитела не реагируют на гемоглобин животных или железо, содержащееся в некоторых продуктах растительного происхождения. Иммунохимический анализ кала на скрытую кровь появился в арсенале медиков сравнительно недавно и уже прочно там обосновался. Суть методики в следующем: образец исследуемого кала наносится на тест-полоску или помещается в окошко планшета с реактивами – моноклональными антителами. Если в биоматериале присутствует человеческий гемоглобин, он связывается с антителами, и в контрольной области проступает полоса ярко-розового или фиолетового цвета. Вторая полоса появляется в любом случае – она представляет собой индикатор доброкачественности прибора. Сдача анализа кала на скрытую кровь таким методом очень напоминает проведение теста на беременность – все очень просто, быстро и понятно. Плюсы:
  • Быстрота и удобство;
  • Отсутствие необходимости в предварительной подготовке и соблюдении диеты;
  • Высокая точность – определяет ранние стадии колоректального рака в 97% случаев.
Минусы:
  • Относительно высокая стоимость;
  • Наличие не в каждой лаборатории;
  • Объективность результатов анализа кала на скрытую кровь только в случае кровотечения в нижних отделах пищеварительного тракта. Агрессивные ферменты, воздействующие на гемоглобин в желудке и тонком кишечнике, приводят его в состояние, негодное для вступления в реакцию с моноклональными антителами.
Флуоресцентный тест Для полноты картины следует упомянуть о том, что скрытая кровь может быть обнаружена в испражнениях в ходе химической реакции с использованием разрушающих реагентов. Азотсодержащие пигменты порфирины, содержащиеся в молекулах гемоглобина и высвобождающиеся наружу при их гибели обладают сверхвысоким коэффициентом светопоглощения – около 10 в 6 степени. Их яркое флуоресцентное свечение и регистрирует лаборант в том случае, если в исследуемом образце кала имеется скрытая кровь. Однако в России этот метод диагностики не очень популярен, особенно в сравнении с бензидиновой пробой. Плюсы:
  • Оперативность;
  • Доступная цена;
  • Относительно высокая точность – около 80%.
Минусы:
  • Необходимость в соблюдении диеты, поскольку порфирины присутствуют в любом гемоглобине, в том числе и в животном.
 
  Микроскопическое исследование кала Микроскопическое исследование дает воз­можность определить мельчайшие остатки пищи, по которым можно судить о степени ее пере­варивания. При микроскопии выявляются отде­ляющиеся в просвет кишечника клеточные эле­менты: лейкоциты, эритроциты, макрофаги, ки­шечный эпителий, опухолевые клетки, а также небольшие комочки слизи; наконец, при микро­скопии обнаруживаются яйца гельминтов и па­разитирующие в кишечнике простейшие.
  Участие в проведении исследования кала на гельминтов, их личинки и части тела Макроскопическая оценка препаратов кала: Макроскопические методы служат для обнаружения в кале целых половозрелых гельминтов или их фрагментов невооруженным глазом или с помощью ручной лупы и/или стереомикроскопа. На поверхности кала после дефекации можно видеть активно ползающих остриц; иногда выделяются с калом аскариды; у пациентов с дифиллоботриозом могут выделяться обрывки стробилы лентеца, а у инвазированных свиным цепнем с калом часто отходят членики гельминта. У инвазированных бычьим цепнем также происходит отхождение члеников, однако значительная доля члеников отходит активно вне дефекации. В живом состоянии такие членики пациенты часто сравнивают с лапшой. Пациент может доставить членики в лабораторию, но если они подсохли, то на лапшу они перестают быть похожи, а выглядят скорее, как чешуйки размером с ноготь мизинца. Перед исследованием такой членик следует размочить в физиологическом растворе. Кроме того, за отхождением взрослых гельминтов необходимо следить при оценке результатов лечения. Необходимые реактивы и оборудование: -Чашки Петри -Черная бумага -Пинцеты -Препаровальные иглы -Предметные стекла большие; -Лупа, микроскоп и бинокулярный стереоскопический микроскоп типа МБС Подготовка к исследованию: 1) Извлекать пинцетом или препаровальной иглой все подозрительные частицы и крупные образования на отдельное предметное стекло или чашку Петри. 2) Образования, подозрительные на фрагменты гельминтов, рассматривать под микроскопом МБС или под лупой между двумя предметными стеклами. 3) Мелких гельминтов рассматривать в капле глицерина или физиологического раствора под микроскопом при увеличении: окуляр МУК 4.2.3145-13 Лабораторная диагностика гельминтозов и протозоозов7 или МУК 4.2.3145-13 Лабораторная диагностика гельминтозов и протозоозов10, объектив МУК 4.2.3145-13 Лабораторная диагностика гельминтозов и протозоозов8 или МУК 4.2.3145-13 Лабораторная диагностика гельминтозов и протозоозов10. 4) Членики ленточных гельминтов поместить на предметное стекло, подсушить, закрыть другим предметным стеклом, слегка сдавить и рассмотреть строение матки. 5) Микроскопия всех визуально обнаруженных в кале паразитов или фрагментов обязательна для уточнения морфологических особенностей и идентификации паразит  
  Исследование микроскопической картины кала на простейшие и яйца гельминтов Нативный мазок. Небольшой кусочек испражнений переносят палочкой на предметное стекло в каплю 50 % водного раствора глицерина (для его получения смешивают равное количество дистиллированной воды и глицерина) и растирают до получения равномерного прозрачного мазка. На одном стекле готовят два мазка. При небольшом количестве яиц в испражнениях их не всегда удается выявить, поэтому применение только этого метода не является полноценным и достоверным. Метод закручивания по Шульману. 2 – 3 г испражнений размешивают стеклянной палочкой круговыми движениями с трех-пятикратным количеством физиологического раствора, не касаясь стенок сосуда. Яйца и личинки гельминтов скапливаются в центре. После окончания перемешивания каплю на конце палочки быстро переносят на предметное стекло, закрывают ее покровным стеклом и исследуют под микроскопом. Этим методом хорошо выявляются личинки гельминтов. Метод толстого мазка под целлофаном по Като и Миура. Толстый мазок представляет собой тонкий слой пробы кала на предметном стекле под гигроскопическим целлофаном, пропитанным смесью глицерина, фенола и малахитового зеленого. Эффективность метода: позволяет просмотреть в 20 – 30 раз больше препаратов кала, чем в нативном мазке. Выявляет яйца гельминтов желудочно-кишечного тракта при высокой и средней интенсивности инвазии.

⇐ Предыдущая12345678Следующая ⇒
  

© helpiks.su При использовании или копировании материалов прямая ссылка на сайт обязательна.